西班牙免校準多光阱光鑷

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價格:請致電：010-67529703
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免校準、多光阱—專為細胞組織力學設計的光鑷

市場上wei一將高速多個光陷阱控制與直接力光譜相結合的光捕獲平臺。光鑷裝置安裝在科學倒置顯微鏡上，可根據您首選的顯微鏡配置進行定制，并可與轉盤共焦、落射熒光或 TIRF顯微鏡等多種成像技術相結合。其靈活性、精確性和易用性允許從一開始就進行前所未有的細胞力學實驗，即使對于非專家用戶也是如此。該系統(tǒng)是一款高端儀器，提供最高質量的光學捕獲和力傳感技術， 能夠對活細胞和組織進行前所未有的操作和機械刺激，同時以直接、絕對和非侵入的方式測量細胞力及其流變特性，所有這些都在科學實驗室的典型預算范圍內。

光捕獲技術

基于聲光轉向技術，我們的光陷阱生成模塊允許以 25 kHz 的頻率同時生成和控制多達256 個光陷阱，比基于振鏡的系統(tǒng)快一個數(shù)量級。光鑷裝置包括單頻紅外激光源（5W，1064nm）。我們直觀且用戶友好的 LightAce 控制軟件將允許您單獨手動控制每個光陷阱或對自動軌跡、周期性振蕩和變形模式進行編程，并將它們同時應用于多個光陷阱。該系統(tǒng)允許記錄細胞力學實驗的視頻，并與多個同步光阱的記錄力和位置數(shù)據同步。

力譜技術

我們獨特的基于光動量變化檢測的直接力傳感器是該儀器的核心。我們獲得專利的獨家力譜技術將允許您測量復雜介質中的光學捕獲力，例如不規(guī)則物體上的活細胞和組織內部，并且遠遠超出力-距離曲線的線性區(qū)域，從而為前所未有的細胞力學實驗打開了大門在體內條件下。最好的部分？無需校準即可獨立于樣品和介質特性來測量力！ 我們的直接力傳感器將允許您同時測量多個陷阱 (256) 上的力，使用其力反饋回路執(zhí)行力夾緊，精確控制樣品平面上的激光照射功率并跟蹤被捕獲物體的位置。

在細胞力學和軟物質物理中的應用

該系統(tǒng)是細胞力學和軟物質物理研究人員的完美工具，使用微球、全細胞或內源性細胞結構作為探針來機械刺激和感測您的樣品，提供多種應用：

• 單分子水平的機械感受器力
• 細胞膜系鏈拉動和變形。
• 主動流變學：細胞和生物組織的彈性、粘度和剛度。
• 細胞核機械 轉導。
• 細胞間相互作用和粘附力。
• 體內和體外運動蛋白動力學。
• 微型游泳者和細菌細胞運動力。

可以在已有顯微鏡上升級配置起來，免校準、使用簡潔方便、經濟。

★可直接自動測量細胞內和組織環(huán)境中微粒的受力,自動化細胞力學研究流程
★免校準測量, te適合測量不規(guī)則顆粒受力
★多光阱捕獲和同步測量（>256個光阱）
★可高精度探測溶液、細胞內和組織內微環(huán)境的粘彈性
★同時熒光成像
★光鑷不需要熒光標定，減少人為干預
★探測力的方式為光子動量改變，所以適合測量復雜環(huán)境難以用傳統(tǒng)方式校準的樣品，以及不規(guī)則顆粒
★多光阱同步測量，可追蹤多個光阱的受力；
★操作方便，點擊屏幕即可設置光阱，拖動光阱捕獲目標顆粒，減少用戶的移動樣品池的操作；
★有微流變的測量模塊，適合探測細胞內和組織內微環(huán)境的粘彈性
★三維高精度力學測量與操控

典型應用：
世聯(lián)博研(北京)科技有限公司專注細胞力學和3D生物打印服務，客服電話：400-650-8506
★1、細胞層次的力學檢測:
1.1、單細胞膜的受力-形變
測量細胞膜的彈性，捕獲手柄小球擠壓和拉伸細胞膜，測量受力與形變量的關系。
可研究細胞膜的彈性與細胞骨架蛋白的關系等。
1.2、單細胞上配體-受體相互作用力檢測
捕獲手柄小球（修飾有相應抗體或者結合蛋白）接觸細胞表面，當配體-受體結合后拉伸時，測量小球受到光阱的
力，量化配體-受體結合對的作用力大小。
可研究免疫細胞的te異性識別機制及細胞表面分子和抗體分子間的相互作用等。
1.3 、細胞-細胞相互作用檢測
直接捕獲細胞接觸靶細胞，待細胞結合一定時間后拉伸細胞，可測量細胞-細胞相互作用的力；還可控制細胞受到te
定刺激；
可原位研究細胞膜表面配體-受體相互作用力大小，以及免疫突觸形成等。
1.4 、單/多細胞的j化和遷移與應力刺激（包括單細胞應力加載培養(yǎng)）
可借助手柄小球在細胞局域上施加應力刺激，研究細胞的j化，以及細胞遷移與應力刺激的關系。

★2、分子層次的動力學te性:
2.1、DNA/RNA的動力學te性
將DNA/RNA通過偶聯(lián)接到手柄小球上，光阱控制手柄小球拉伸生物大分子，可獲得DNA的hairpin結構和RNA的stem
結構打開的力學特征，以及結合蛋白對其動力學te性的影響。
2.2、 蛋白質結構域的受力調控
將蛋白質通過巰基結合DNA末端，將手柄DNA鏈接到微球上，光阱拉伸微球，可研究蛋白質結構折疊和去折疊的力
學特征。
2.3、 馬達蛋白的動力學te性
將馬達蛋白分子偶聯(lián)在微球上，通過光阱將微球定位到microtubule或actin骨架蛋白上，馬達分子消耗ATP分子轉化為
機械能，可研究分子馬達的運動的動力學te性和多分子協(xié)同運動te性。

★3、多顆粒操縱和細胞分選:
3.1、多顆粒操縱
可自由操縱多個顆粒進行空間排列及運動探測。
3.2、te定細胞分離
可將目標細胞捕獲移動到指定區(qū)域，便于分離細胞。

★4、粘彈性測量:
4.1、細胞內粘彈性
光阱捕獲細胞內的囊泡，以囊泡的主動/被動運動反演微流變te性，獲得粘性和彈性模量。
4.2、 組織微環(huán)境的粘彈性
捕獲導入的微粒，探測微粒的主動/被動運動反演微流變te性，獲得粘性和彈性的模量。采用多光阱同時測量，可鑒
別不同區(qū)域的粘彈性。

★5、剛度、硬度測量:

應用文獻案例：

• •R. Meissner, N. Oliver and C.Denz. “Optical Force Sensing with Cylindrical Microcontainers“.Part. Part. Syst. Charact. 2018, 1800062.
• •F.Català, F. Marsà, M. Montes Usategui, A. Farré & E. Martín-Badosa. “Influence of experimental parameters on the laser heating of an optical trap“. Sci. Rep. 7, 16052; doi:10.1038/s41598-017-15904-6 (2017).
• •Català, F. et al. “Extending calibration-free force measurements to optically-trapped rod-shaped samples“. Sci. Rep. 7, 42960; doi: 10.1038/srep42960 (2017).
• •R. Bola, F. Català. M. Montes-Usategui, E. Martín-Badosa. “Optical tweezers for force measurements and rheological studies on biological samples”.15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• •Martín-Badosa, F. Català, J. Mas, M. Montes-Usategui, A. Farré, F. Marsà. “Force measurement in the manipulation of complex samples with holographic optical tweezers”15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• Derek Craig, Alison McDonald, Michael Mazilu, Helen Rendall, Frank Gunn-Moore, and Kishan Dholakia. “ Enhanced Optical Manipulation of Cells Using Antireflection Coated Microparticles”.ACS Photonics, 2 (10), pp 1403–1409, (2015).
• •Xing Ma, Anita Jannasch, Urban-Raphael Albrecht, Kersten Hahn, Albert Miguel-López, Erik Sch?ffer, and Samuel Sánchez. “Enzyme-Powered Hollow Mesoporous Janus Nanomotors”. Nano Lett., 15 (10), pp 7043–7050, (2015).
• •Michael A. Taylor, Muhammad Waleed, Alexander B. Stilgoe, Halina Rubinsztein-Dunlop and Warwick P. Bowen. “Enhanced optical trapping via structured scattering“. Nature Photonics 9,669–673 (2015)
• •Gregor Thalhammer, Lisa Obmascher, and Monika Ritsch-Marte, “Direct measurement of axial optical forces“.Optics Express, Vol. 23, Issue 5, pp. 6112-6129 (2015)
• •Y. Jun, S.K. Tripathy, B.R.J. Narayanareddy, M. K. Mattson-Hoss, S.P. Gross, “Calibration of Optical Tweezers for In Vivo Force Measurements: How do Different Approaches Compare?”. Biophysical Journal, V 107, 1474-1484 (2014).
• •A. Farré, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “The measurement of light momentum shines the path towards the cell”, Opt. Pur Apl. 47, 239-248 (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “A force measurement instrument for optical tweezers based on the detection of light momentum changes”, Proc. SPIE 9164, 916412 (2014).
• •J. Mas, A. Farré, J. Sancho-Parramon, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “Force measurements with optical tweezers inside living cells”,  Proc. SPIE 9164, 91640U (2014).
• •F. Català, F. Marsà, A. Farré, M. Montes-Usategui, and E. Martín-Badosa, “Momentum measurements with holographic optical tweezers for exploring force detection capabilities on irregular samples”, Proc. SPIE 9164, 91640A (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “Optimized back-focal-plane interferometry directly measures forces of optically trapped particles” Opt. Express 20, 12270-12291 (2012).